背景
最常见的基因编辑肿瘤模型为在受精卵或胚胎干细胞中进行基因改造,敲入癌基因或者敲除抑癌基因,从而获得可以遗传的基因编辑动物。例如KPC基因编辑小鼠,在胰腺中过表达KRAS基因和敲除p53基因从而诱发胰腺癌。传统基因编辑动物的构建比较复杂,繁育周期也长,不容易实现大批量造模。而且存在费用高,成瘤时间长等问题。
图2. 高压尾静脉注射质粒造肝癌模型结果展示
原理
众所周知,质粒很难在动物体内发生转染,一般需要电转或者通过病毒转染等方式。上述肝癌造模方法也是通过尾静脉快速注射大体积质粒溶液来提高转染效率。有文献报道在肺、甲状腺、肌肉、皮肤等组织或器官中直接注射质粒,也可以发生较低效率的转染。但由于转染效率太低,成功转染质粒的细胞很少,而且只能短时间表达基因,因此无法用于动物造模。动物自然发生肿瘤一般是少量细胞基因组发生基因突变,日积月累诱发癌变,最终大量扩增形成肿瘤。因此,本公司发明了一种直接注射包含癌基因/抑癌基因抑癌序列的质粒溶液,从而模拟动物自然发生肿瘤的模型构建方法(申请号:202311028166X)。该方法一次性注射大量质粒,以弥补转染效率低的问题,保证有部分细胞能够转染成功。除了注射含目的基因的质粒外,同时还注射含转座酶基因的质粒。转座酶表达后将目的基因插入染色体,实现基因组发生基因突变。
造模方法
b. 将构建的目的基因质粒以单个或多个组合与转座酶质粒按一定比例混合在特定溶液中;
c. 将混合好的质粒组合溶液原位注射到动物待造模器官或组织内;
d. 数周后可在造模器官或组织内注射部位形成原位原发肿瘤。
图3. 新型基因编辑肿瘤模型造模示意图
结果
图4. 小鼠胃部注射质粒溶液造模不同时间胃癌大体图
图5. 小鼠不同器官注射质粒溶液形成肿瘤图
图6. 大鼠肝脏注射质粒溶液形成肝癌大体图
优势分析
此模型可模拟动物体内由于遗传改变导致正常细胞向肿瘤细胞转化的过程,能动态地表征肿瘤发生发展地过程,在基因层面、肿瘤微环境、肿瘤发展及病理生理等方面与肿瘤发生发展真实情况更加贴近。并且该构建方式具备效率高、耗时短,成本低,成瘤率高、可大量制备等优点,可以为科研人员节省大量时间和经费。该模型为探究肿瘤发生发展机制、寻找和优化新的肿瘤治疗方法提供了有利工具。
表1.不同肿瘤模型优缺点比较
参考文献
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